omega試劑盒憑借高純度、高得率和操作便捷性,成為DNA/RNA提取的實(shí)驗(yàn)室選擇。然而在實(shí)際使用中,可能會(huì)因樣本處理不當(dāng)、操作疏漏或環(huán)境干擾,導(dǎo)致核酸得率低、降解、純度差或下游實(shí)驗(yàn)失敗。快速識(shí)別
omega試劑盒問題根源并科學(xué)干預(yù),確保提得全、純得凈、用得順。
一、核酸得率低或無產(chǎn)物
原因分析:
樣本量不足或裂解不充分(如組織未勻漿、細(xì)菌未溶菌);
結(jié)合條件錯(cuò)誤(如未加乙醇至結(jié)合緩沖液);
洗脫體積過大或洗脫液未預(yù)熱。
解決方法:
確保樣本充分裂解:植物/動(dòng)物組織需液氮研磨,革蘭氏陽(yáng)性菌加溶菌酶;
嚴(yán)格按說明書添加無水乙醇至BufferBL/W1等(通常70%終濃度);
用30–50μL65℃預(yù)熱的無核酸酶水洗脫,靜置2分鐘后離心。
二、RNA嚴(yán)重降解(電泳無28S/18S條帶)
原因分析:
RNase污染(手套、臺(tái)面、槍頭未防RNase處理);
樣本未及時(shí)冷凍或裂解液失效;
操作時(shí)間過長(zhǎng),室溫暴露久。
解決方法:
全程使用RNase-free耗材,佩戴雙層手套,勤換;
樣本采集后立即凍存于–80℃,裂解液現(xiàn)加β-巰基乙醇;
RNA提取控制在30分鐘內(nèi)完成,必要時(shí)在冰上操作。
三、A260/A280比值異常(DNA<1.7,RNA<2.0)
原因分析:
蛋白質(zhì)或酚類殘留(洗滌不到位);
乙醇未全去除,干擾吸光度;
植物多糖/多酚共沉淀。
解決方法:
增加一次W2緩沖液洗滌,確保去除雜質(zhì);
空柱離心2分鐘揮發(fā)乙醇;
植物樣本加PVP或CTAB預(yù)處理,減少多酚干擾。
四、下游PCR/qPCR抑制或失敗
原因分析:
鹽離子或乙醇?xì)埩簦?/div>
核酸濃度過高(含抑制物);
提取過程中引入外源DNA污染。
解決方法:
將提取產(chǎn)物稀釋5–10倍后重試PCR;
加入BSA(0.1μg/μL)緩解抑制;
設(shè)陰性對(duì)照(無模板)監(jiān)控污染,若陽(yáng)性需更換試劑批次。